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Unidade 2, 503, Edifício 3, Baixian Garden, No. 128, Rua Norte de Malianwa, Distrito de Haidian, Pequim
Pequim Nobolade Tecnologia Co., Ltd.
Unidade 2, 503, Edifício 3, Baixian Garden, No. 128, Rua Norte de Malianwa, Distrito de Haidian, Pequim
Kit de clonagem de veículo pBLUE-T
Kit de clonagem de veículo pBLUE-T T4 Principal Veículo e outros
Número de catálogo: 42014
Composição, armazenamento e estabilidade:
Composição do Kit |
20 vezes. (42014-20) |
60 vezes. (42014-60) |
Pblue-tvector (30 por / ml) |
20ml |
60ml |
1000 BP contra (30 de / ml) |
5ml |
5ml |
10 ´ reforçador PEG |
50ml |
150ml |
10 x tampão ligação |
40ml |
120ml |
2 ´ Rápidotampão ligação |
100ml |
300ml |
Q 4 DNA ligase, 5 U /ml |
20ml |
60ml |
Armazenamento a 20 ° C, não afeta o efeito do uso durante 6 meses.
Introdução do produto:
Muitas DNA polimerases de alta temperatura, tais como Taq DNA polimerase, Tth DNA polimerase, etc., amplificam os produtos da PCR em 3'-Os terminais são acompanhados por uma base A saliente, de modo que o produto de PCR pode ser usado em 3'-O veículo com uma base T saliente na extremidade posterior é facilmente clonado. O veículo pBLUE-T é derivado do plasmídeo pBlueScript II SK(+), com a sequência apropriada adicionada no ponto de corte da enzima EcoRI, que resulta diretamente na base T não emparelhada em seus extremos 3’ após corte da enzima XCM I, com maior eficiência de recombinação. Os dois locais ECOR I projetados para ambas as extremidades do ponto de inserção do veículo pBLUE-T permitem que os segmentos de inserção possam ser detectados com monocesão ECOR I econômica e eficiente; Além disso, o veículo pBLUE-T não contém os locais NdeI ou NcoI restritivos, o que facilita a clonação de genes que contêm os locais acima mencionados. Além disso, o sistema de conexão do veículo da empresa possui características como baixo fundo (menos de 10% das manchas azuis), alta taxa de recombinação (mais de 90% das manchas brancas têm segmentos inseridos) e conexão rápida. As informações técnicas relacionadas ao veículo pBLUE-T são listadas no final desta nota, cuja sequência completa pode ser referenciada à sequência SK(+) do pBlueScript II, mas com uma sequência ligeiramente diferente no local da polyclonase.
A sequência pode ser realizada com o iniciador T3, T7 e o iniciador de sequência universal M13 (veja o gráfico posterior)
Passos operacionais:
1. Preparação da reação de conexão:
Se o produto de PCR deve ser purificado depende da qualidade do produto amplificado. Se o produto da PCR for muito limpo, a reação de ligação pode ser realizada diretamente sem purificação. No entanto, se o produto de PCR é baseado em plasmídeos como modelo, ele deve ser purificado e os plasmídeos do modelo também podem formar manchas brancas. PCROs produtos podem ser separados por eletróforese em gel de againe. A nossa empresa produz um kit de reciclagem de purificação rápida de produtos de DNA para 7Fragmentos de DNA acima de 0 bp podem ser bem recuperados.
Produtos de PCR amplificados por DNA polimerase Taq, Tth, AmpliTaq e KlenTaq, todos com um 3’ saliente nas extremidades-A。 Possui3’-Os produtos da PCR no terminal A podem ser clonados diretamente com o veículo pBLUE-T. Tem 3’®O produto de PCR amplificado pela ADN polimerase (hiperpolimerase) com atividade de 5' de extraceptase é de extremo plano, para clonar este produto de PCR de extremo plano, deve ser realizado primeiro 3'-Função A.
2. Reações gerais de conexão:
1) Em um padrão de 10ml Conecte o sistema de reação, adicionando 1ml30% do pblue-ttransportadores, Xml PCRProduto (em condições normais, não é necessárioPCRQuantificação precisa do produto, a proporção molar do produto de PCR e do veículo é otimizada para 2: 1 ~ 10: 1 para obter bons resultados, recomendado 3: 1).1ml 10´tampão ligaçãoe 0,5-1ml(DNA T4 de 2,5-5 unidades de WeissLigase, O resto é reabastecido com água. A reação é realizada de acordo com o seguinte sistema:
1μl |
10 x Ligation Buffer (mistura completa antes de usar) |
1μl |
10 × PEG reforçador |
1μl |
vetor pBLUE-T |
X μl |
Produto de PCR purificado / ou 1 ml de controle 1000bp |
Y μl |
Água estéril |
0,5-1ml (5 Unidades Weiss/ml) |
DNA ligase Q 4 |
Volume Final |
10μl |
A ligase de DNA T4 é adicionada.
2) Conexão a 16 ° C durante a noite (geralmente pode ser feita em um instrumento de PCR).
Geralmente recomendado 16 ° C ligação durante a noite (10mlA quantidade padrão de ligação do sistema é de 2,5Unidades WeissÉ possível obter o maior número de conversores. Mas o sistema com o PEG Enhancer aumenta a eficiência da conexão várias vezes.,Em casos de alta quantidade de enzimas de ligação (10mlA dose recomendada do sistema de ligação é de 5Unidades WeissConexão de 16 ° C por 30 minutos pode atingir os requisitos gerais de pesquisa.
3)Resfriar no gelo e, em seguida, transformar ou armazenar a -20 ° C.
3. Reação rápida de conexão:
1) A reação é realizada de acordo com o seguinte sistema:
5 μl |
2 x Quick Ligation Buffer (mistura completa antes de usar) |
1μl |
vetor pBLUE-T |
X μl |
Produto de PCR purificado / ou 1 ml de controle 1000bp |
Y μl |
Água estéril |
1ml (5 Unidades Weiss/ml) |
DNA ligase Q 4 |
Volume Final |
10μl |
A ligase de DNA T4 é adicionada.
2) 22 ° C ligação por 5-10 minutos (geralmente pode ser feito em um instrumento de PCR).
2 ´O Quick Ligation Buffer já contém todos os componentes de ligação rápida otimizados, geralmente recomendado para uma ligação de 22 ° C por 10 minutos(10mlEnzima de ligação do sistema é de 5Unidades WeissAs conexões de segmentos longos podem ser prolongadas até 30 minutos) geralmente podem obter resultados satisfatórios. Além disso, o sistema também pode ser conectado a 16 ° C por 30 minutos (10mlEnzima de ligação do sistema é de 5As unidades de Weiss são necessárias para a pesquisa geral.
3)Resfriar no gelo e, em seguida, transformar ou armazenar a -20 ° C.
4. Conversão:
em50-100ml Células sensíveis, colocadas no gelo e suspensas uniformemente as células várias vezes após o descongelamento total.
emJunte-se 4-5mlO líquido de conexão (que pode ser adicionado até totalmente, desde que o volume não exceda 1/10 do volume das células sensíveis) é misturado suavemente. Colocar no gelo30 minutos. 42 ℃ banho de água quente 90Um segundo. Colocação no gelo 2~ 3 minutos.
emMais 500mLB ou SOC (sem antibióticos), 37°C 150 rpmCultura de oscilação por 60 minutos.
emSerão 200mlBactérias revestidas em pré-uso 16ml 50 mg / ml IPTGe 40ml 20 mg/ml X-gal revestido em comprimidos de penicilina su.
A dose de bactéria revestida é ajustada adequadamente de acordo com a eficiência da conexão e a sensibilidade das células sensíveis, se menos clonação prevista, parte do líquido de cultura pode ser absorvida por centrifugação (4.000 rpm, 2 minutos), deixando a quantidade adequada de meio de cultura em suspensão de bactéria após a retirada total ou a quantidade moderada pode ser revestida em uma placa (o líquido restante revestido pode ser mantido em 4 graus e conservado no dia 2, se o número de colônias convertidas for menor, o líquido restante pode ser revestido em uma nova placa de cultura).
emO comprimido é colocado em direção a 37 ° C por 1 hora para absorver o excesso de líquido e, em seguida, inverte a cultura durante a noite.
5 Filtração:
1). Filtração azul e branco do conversor:
Quando um fragmento de DNA exótico é inserido no pBLUE-TDepois, devido às fontes externasA presença de uma sequência de ácidos nucleicos no DNA altera a codificação do gene LacZ, afetando seu produto.b-Semilactosidaseum-A atividade do fragmento e, portanto, o clone recombinante é apresentado em branco na placa X-gal/IPTG, em vez do clone recombinante em azul. Às vezes.Inserir segmento sem efeitoA caixa de leitura do gene lacZ, ou o fragmento inserido é muito pequeno, nesse caso a colônia (clone recombinante) apresenta um azul claro ou uma mancha azul claro no centro da colônia, com o círculo exterior branco (olho de peixe azul mancha). Escolha colônias brancas ou azuis claros que cresçam em comprimidos IPTG/X-gal, selecione com uma barra de dentes um meio líquido contendo ampecilina su e cultive durante a noite a 37°C.
2). Identificação do conversor:
a.Extrair o plasmido com a bactéria da colônia branca cultivada acima, cortar com monoenzima ECOR I ou com outra enzima apropriada, eletróforese em gel de againe para verificar o tamanho do fragmento para determinar se contém o fragmento de destino.
b.Escolha as colônias brancas para teste PCR direto (veja a versão 3 da Clonação Molecular ou consulte-nos)
c) Sequenciamento de subiniciadores T3 e T7 ou outros iniciadores adequados para determinar se a clonação destinada é contida.
Como calcular a quantidade de produtos de PCR necessários para a reação de conexão?
A proporção molar do produto de PCR e do veículo é otimizada para 2:1 a 10:1 (recomendado 3:1) para obter bons resultados, usando a seguinte fórmula:
[A quantidade de inserção do veículo (ng) × tamanho do segmento de inserção (kb) ÷ tamanho do veículo (kb)] × a proporção molar do segmento de inserção e do veículo = a quantidade do segmento de inserção (ng) Por exemplo: a proporção molar do segmento de inserção e da conexão do veículo é de 3: 1, se a reação de conexão adicionar o veículo 40ng, o tamanho do segmento de inserção é de 1000bp, então a quantidade do segmento de inserção deve ser adicionada como [40ng veículo × 1kb inserção do segmento ÷ 2,984kb veículo] × 3/1 = 40,2ng.
Kit de clonagem de veículo pBLUE-T T4 Principal Veículo e outros